線栓法製備大鼠局灶性腦缺血模型 昆明製藥集團

2023-02-10 18:36:05 字數 2334 閱讀 6495

線栓法製備大鼠局灶性腦缺血模型(mcao)

一、 mcao模型製備

選用體質量(260-330)g大鼠,用2%戊巴比妥納ip麻醉(45mg/kg),仰臥固定於手術台上。減去頸部毛髮,75%酒精棉球擦拭消毒。於頸正中偏右1cm處切口(口長2cm左右),剪開淺筋膜,分離乳突泡,顯露右側胸鎖乳突肌,鈍性分離胸鎖乳突肌與胸骨舌骨肌間的肌間隙,暴露右側頸總動脈(cca)和迷走神經。

鈍性撕開頸動脈鞘,分離cca,注意避免損傷迷走神經。分離右側頸外動脈(eca)、頸內動脈(ica),結紮eca近心端[不必至顱底找出ica顱外段的分支翼顎動脈(ppa),並將其分離結紮],結紮cca近心端,並在其分叉處打一活結備用。用動脈夾夾住ica,在cca分叉處剪一小口,插入預先處理好的魚線(0.

26mm),將預製的活結稍打緊(防止魚線脫出)。鬆開夾住ica的動脈夾,將魚線緩慢向ica插入(向內上方的角度插入,否則易誤入ppa),目視魚線頭部進入ica,而不是ppa(如果誤入ppa,因魚線不能入顱,插入長度一般不超過10 mm則被阻)。繼續將魚線緩慢向ica入顱方向推進,插入長度約(18.

5±0.5)mm(從cca分叉處計算),微遇阻力時停止。紮緊預製活結,以防止ica內的線栓移動和出血,最後逐層縫合淺筋膜、**(暴漏線頭1cm,剪除魚線多餘末端)。

慶大黴素肌注預防感染,術後保溫至動物清醒。

阻斷3h後實行再灌注,再灌注(抽出魚線約1cm)24h或48h後處死大鼠,進行相關指標的測定。

二、mcao模型的評價

1)大鼠甦醒後,按longa評分法(神經學檢查分5個等級,0分:正常,無神經功能缺損;1分:左側前爪不能完全伸展,輕度神經功能缺損;2分:

行走時,大鼠向左側轉圈,中度神經功能缺損;3分:行走時,大鼠身體向左側傾倒。重度神經功能缺損;4分:

不能自發行走,有意識喪失。大於0分者入選

2)homer's徵陽性

3)右側眼球灰白發暗(插到位後大鼠心跳呼吸加快)

4)取腦時無蛛網膜下腔出血

5)腦組織ttc染色有缺血病理改變

三、測定指標

1、參考bederson評分法略作修改,作為評分標準,具體如下:

(1) 提尾懸空大鼠,手術對側前肢無屈曲、腕屈及同時腕屈與肘屈分別計為0、1與2分。

(2) 大鼠行走路徑向手術對側無偏移、有偏移及偏移呈圓形甚至原地旋轉分別計為0、1與2分。

(3) 刺激大鼠手術對側頰須,反應靈敏、不靈敏及沒有反應分別計為0、1與2分。

(4) 動物軀體向手術對側無扭轉、偶爾扭轉及頻繁扭轉分別計為0、1與2分。

(5) 總分為8分。

指標觀察:分別於再灌注6h及24h進行1次神經病學評分,以24h內2次評分的平均值作為評價指標。

2、缺血3h再灌注24h或48h時,各組大鼠麻醉,斷頭取腦,放於-20度變硬,由前向後做2mm連續冠狀切片(5個)(去除嗅球、小腦和低位腦幹,然後水平切4刀分成5片。第一刀在腦前極與視交叉連線中點,第二刀在視交叉部位,第三刀在漏斗柄,第四刀漏斗柄與腦葉尾極之間),置於2%ttc溶液中,37度恆溫**孵育30min後濾除2%ttc溶液。用10%甲醛中避光固定(初步24h左右),拍照,用motic images plus 2.

0 顯微圖象分析系統計算梗塞面積(粉紅色為未受損的正常組織,而梗塞區則因線粒體損害不染色,呈白色)。因為腦水腫對其梗塞體積有影響,故採用公式對其修正。具體公式如下:

腦梗塞灶體積(mm3)=總梗塞面積×腦片厚度(2mm)

水腫修正後的腦梗塞灶體積(mm3)=梗塞體積×對側半球體積/同側半球體積

梗塞率(%)=水腫修正後的腦梗塞灶體積/雙側大腦半球體積×100%。

或者將每個腦平面(5片10面)投射到密度均一的鋁箔上,剪下梗塞面積,以「重量求面積法」計算缺血組織重占總腦重的百分比作為梗塞範圍的大小。

3、腦指數和腦組織水分含量

3.1腦指數:斷頭取腦,冰冷生理鹽水洗淨,濾紙吸盡水分,稱重。指標測定:腦指數=腦濕重/體質量(mg/g)

3.2 腦組織水分含量:用乾濕重法測定腦組織水分含量。取對側腦切片,稱取濕重,染色後,放入105℃烘箱12h烘至恒重,稱取乾重,計算腦組織含水量。

指標測定:腦組織含水量=(腦片濕重-腦片乾重)/腦片濕重×100%

mcao模型分析

線栓法的另乙個缺點是模型的操作需要乙個熟練過程,不同的操作者之間的誤差很大,只有熟練者才能複製出穩定的梗死灶。

影響因素

1、體溫實驗中溫度過高或過低均會影響神經細胞損傷。37℃,並在溫度感測器塗上潤滑膏或凡士林,插入直腸記錄身體深部體溫的變化。

2、血糖腦缺血時動物血糖輕度公升高,而高血糖本身就可使腦梗死的面積明顯增加。為了控制動物血糖

水平,在實驗前禁食12~24小時,但不禁水。

3、體重》350 g的大鼠顱內血管增粗,難以充分阻斷血流;體重<240 g的大鼠有時難以插入栓線,因此大鼠的體重以260~320 g為宜。

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