蛋白質測量方法

2022-08-02 03:15:04 字數 2583 閱讀 8946

實驗目的:

1.掌握分光光度計的使用方法。

2.掌握標準管法測物質含量的方法。

3.掌握雙縮脲法測定蛋白質含量的方法。

一、原理:

雙縮脲是由兩分子尿素縮合而成的化合物,在鹼性溶液中與硫酸銅反應生成紫紅色絡合物,此反應即為雙縮脲反應。含有兩個或兩個以上肽鍵的化合物都具有雙縮脲反應。

蛋白質含有多個肽鍵,在鹼性溶液中能與cu2+絡合成紫紅色化合物。其顏色深淺與蛋白質的濃度成正比,可以用比色法進行測定。雙縮脲法最常用於需要快速但並不需要十分精確的測定

2、試劑和器材

(1) 標準蛋白溶液(5mg/ml):準確稱取已定氮的酪蛋白(乾酪素或牛血清白蛋白)用0.05mol/l氫氧化鈉溶液配製,冰箱存放備用。

(2) 雙縮脲試劑:溶解1.5g硫酸銅(cuso4·5h2o)和6.

0g酒石酸鉀鈉(nakc4h4o6·4h2o)於500ml蒸餾水中,在攪拌下加入300ml10%氫氧化鈉溶液,用水稀釋到1000ml,貯存於內壁塗以石蠟的瓶內。此試劑可長期儲存。

(3) 樣品血清:動物血清用水稀釋10倍,置於冰箱儲存備用。標準曲線法所用的血清需20倍稀釋。

器材:分析天平、分光光度計、 恆溫水浴箱、 試管、 吸量管等

三、操作方法:

1.取三支試管按下錶操作

2、搖勻,37℃水浴20min後用分光光度計於540nm波長處比色,以空白管調零點,測得各管吸光度。

3、計算:

血清總蛋白質(g/100ml)=a測/a標×0.005×100/0.1

實驗原理:雙縮脲(nh3conhconh3)是兩個分子脲經180℃左右加熱,放出乙個分子氨後得到的產物。在強鹼性溶液中,雙縮脲與cuso4形成紫色絡合物,稱為雙縮脲反應。

凡具有兩個醯胺基或兩個直接連線的肽鍵,或能過乙個中間碳原子相連的肽鍵,這類化合物都有雙縮脲反應。紫色絡合物顏色的深淺與蛋白質濃度成正比,而與蛋白質分子量及氨基酸成分無關,故可用來測定蛋白質含量。測定範圍為1~10mg蛋白質。

干擾這一測定的物質主要有:硫酸銨、tris緩衝液和某些氨基酸等。

(1)此法的優點是較快速 ,不同的蛋白質產生顏色的深淺相近,以及干擾物質少。主要的缺點是靈敏度差。因此雙縮脲法常用於需要快速,但並不需要十分精確的蛋白質測定。

(二)試劑與器材

1.試劑:

(1)標準蛋白質溶液:用標準的結晶牛血清清蛋白(bsa)或標準酪蛋白,配製成10mg/ml的標準蛋白溶液,可用bsa濃度1mg/ml的a280為 0.66來校正其純度。

如有需要,標準蛋白質還可預先用微量凱氏定氮法測定蛋白氮含量,計算出其純度,再根據其純度,稱量配製成標準蛋白質溶液。牛血清清蛋白用h2o或0.9%nacl配製,酪蛋白用0.05n naoh配製。

(2)雙縮脲試劑:稱以1.50克硫酸銅(cuso45h2o)和 6.

0克酒石酸鉀鈉(knac4h4o64h2o),用500毫公升水溶解,在攪拌下加入300毫公升10% naoh溶液,用水稀釋到1公升,貯存於塑料瓶中(或內壁塗以石蠟的瓶中)。此試劑可長期儲存。若貯存瓶中有黑色沉澱出現,則需要重新配製。

2.器材:

可見光分光光度計、大試管15支、旋渦混合器等。

(三)操作方法

1.標準曲線的測定:取12支試管分兩組,分別加入0,0.

2,0.4,0.6,0.

8,1.0毫公升的標準蛋白質溶液,用水補足到1毫公升,然後加入4毫公升雙縮脲試劑。充分搖勻後,在室溫(20~25℃)下放置30分鐘,於540nm處進行比色測定。

用未加蛋白質溶液的第一支試管作為空白對照液。取兩組測定的平均值,以蛋白質的含量為橫座標,光吸收值為縱座標繪製標準曲線。

2、樣品的測定:取2~3個試管,用上述同樣的方法,測定未知樣品的蛋白質濃度。注意樣品濃度不要超過10mg/ml。

紫外吸收

原理蛋白質分子中含有酪氨酸、色氨酸及苯丙氨酸等殘基,它們的結構中具有共軛雙鍵,對紫外光有吸收作用,其最大值在280nm波長處。在此波長附近,蛋白質溶液的光吸收值與其含量(範圍是0.1~1.

0mg/ml)成正比,因此,280nm的吸光度可用作蛋白質的定量測定。若將已知不同濃度的蛋白質標準溶液在 280nm處測定,並作標準曲線,即可求得未知溶液的蛋白質濃度。此法測定迅速,用量較少,而且不消耗樣品和試劑。

但若樣品中含有其他在280nm吸收的物質,如嘌呤嘧啶等化合物時,就有干擾作用。

(二)試劑及器材

(1)標準蛋白質溶液:準確稱取經凱氏定氮法校正的結晶牛血清白蛋白,配製成濃度為1mg/ml的溶液。

(2)待測蛋白質溶液:濃度為1mg/ml左右的蛋白質溶液。

(三)操作

1. 280nm的光吸收法

(1)標準曲線的繪製:取8支試管,編號後按下表加入試劑。

混勻,選用光程為1cm的石英比色杯,在紫外分光光度計280nm波長處以0號管調「零」分別測定各管溶液的光密度(od280)。以縱座標為光密度值,橫座標為蛋白質濃度繪出標準曲線。

(2)樣品測定:取待測蛋白質溶液1ml,加入蒸餾水3ml,混勻,按上述方法測定280nm波長處的光密度值,並從標準曲線上查出待測蛋白質的濃度。

2.280nm和260nm的吸收差法將待測的蛋白質溶液稀釋到光密度在0.2~2.0之間,在波長280nm和260nm處以相應的溶液作空白對照,分別測得待測樣品的光密度值(od280和od260)。

應用280nm和260nm的吸收差法經驗公式直接計算出蛋白質濃度。

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