IPTG誘導方法

2022-05-09 01:06:03 字數 3270 閱讀 9903

3、sds-page分析

(1)樣品的處理

取1 ml菌液,10000 rpm離心1 min,棄上清,重懸於100 l 去離子水,加入100 l 2×sds凝膠上樣緩衝液,渦旋混勻,100 ℃加熱3-5分鐘,10000 rpm離心3 min備用。

(2)sds-page凝膠的製備

①按下列配方組成配製4 ml 12%分離膠

h2o 1.32 ml,30%凝膠貯備液1.6 ml,分離膠緩衝液1 ml,10%sds 0.

04 ml,10%過硫酸銨0.04 ml,最後加入temed 0.002 ml。

②一旦加入temed,混勻後立即小心將分離膠注入準備好的玻璃板間隙中,注意為積層膠留有足夠的空間。輕輕在其頂層加入2 ml去離子水,覆蓋凝膠,以阻止空氣中的氧氣對凝膠聚合的抑制作用。

③聚合完成之後,倒掉覆蓋在凝膠上層的液體,盡可能用濾紙吸幹凝膠頂層的殘存液體。

④按下列配方組成配製1 ml 5%積層膠

h2o 0.675 ml,30%凝膠貯備液0.1675 ml,積層膠緩衝液0.

125 ml,10%sds 0.01 ml,10%過硫酸銨0.01 ml,最後加入temed 0.

001 ml。

將積層膠灌入分離膠上面,插入梳子,垂直放置於室溫下。

⑤積層膠聚合完成後,用去離子水沖洗梳孔。將凝膠放入電泳槽上,加入電泳緩衝液,小心拔出梳子。

(3)電泳

①安裝好電泳槽,將電極插頭與適當的電極相連。

②開始時電壓為8v/cm,染料進入分離膠後,將電壓增加到15 v/cm。繼續電泳直到染料到達分離膠底部,斷開電源。

③取下凝膠,將凝膠置於考馬斯亮藍染色液中放搖床上緩慢旋轉3-4小時或過夜。

④換掉並**染色液。用脫色液浸泡凝膠,緩慢搖動4-8小時,其間換液3-4次。繼續脫色,直到滿意為止。

⑤用凝膠成像系統對凝膠進行照相和分析。

我們一般都是用乙醇的:

染色液:1g考蘭(r-250),300ml乙醇,100乙酸,純水定容至1000ml.攪拌過夜,再過濾

脫色液:500ml乙醇,100ml乙酸,純水定容至1000ml

我們這是生產用量,你可以按比例減量

(切膠免疫)

兔1、抗原製備

(1)配製10%分離膠和5%濃縮膠,將濃縮後的蛋白與10×電泳加樣緩衝液混合,100℃煮沸10分鐘,進行恆流電泳,濃縮膠電壓為80v,分離膠電壓為180v。

(2)電泳後,將凝膠用考馬斯亮藍r250染色。

(3)在分子量約為3kda處可見較寬條帶,切取該條帶,進行研磨,-20℃凍存。

2、動物免疫

(1)將製備好的抗原分別免疫2隻大耳白雌兔,首次免疫劑量為1 mg /只,經皮下多點及腹腔注射,

(2)3週後進行第二次免疫,劑量及免疫途徑同首次免疫。

(3)二次免疫後測定血清效價,並用western確認免疫效果。

3、高丰度蛋白多轉殖抗體的製備

免疫效果驗證的大耳白兔,經心臟穿刺放血處死,動物血靜置2小時,2000r/min離心,獲得動物血清,此即多轉殖抗體。

4、western蛋白印記鑑定多轉殖抗體

(1)將超濾濃縮後腮腺液分別與2×還原型及非還原型電泳加樣緩衝液混合,100℃煮沸10分鐘,製備還原型及非還原型樣本

(2)進行常規恆流電泳,電泳後,電轉於硝酸纖維素膜上,電壓18v,時間30分鐘

電轉後,將硝酸纖維素膜置於5%脫脂奶粉進行封閉1小時以上,免疫後兔血清(多抗)1∶1000稀釋作一抗進行孵育過夜,正常兔血清1∶1000稀釋作陰性對照,tbst作空白對照

(3)次日,tbst洗膜4次,15min /次,辣根過氧化物酶標記羊抗兔及辣根過氧化物酶標記羊抗兔(igg)1∶10000稀釋作二抗孵育1小時,tbst洗膜3次,tbs洗膜1次,15min /次,**1~2min,顯影。

3、擴大培養

將bl-pet-fat/cd36菌液接種到4 ml la液體培養基中,37 ℃,200 rpm振搖培養過夜。

取500 l培養過夜的菌液接種到含500 ml la液體培養液的三角培養瓶中,共6瓶,37 ℃,200 rpm振搖培養至od600至0.6~0.8時,加入1 m的iptg,使iptg終濃度為0.

5 mm,誘導6 h

4、蛋白純化

(1)融合蛋白的變性裂解上清液的製備

由於表達產物為包涵體的非可溶性蛋白,因此需進行蛋白質的變性,操作步驟如下:

①4 ℃,10000 rpm離心10 min收集菌體。

②稱量細菌濕重,按每克細菌溼重用5 ml 8 m尿素的1×結合緩衝液,重新懸浮細菌。

③將懸浮液在室溫條件下置搖床上溫和搖動1 h。

④12000 rpm室溫離心20 min。

⑤上清液即為蛋白質的變性液,棄沉澱。

⑥純化之前用0.45 μm濾膜過濾上清。

(2)層析柱的製備

當樹脂沉降、儲存液的液面降至樹脂表面時,按以下順序清洗、離子化和平衡色譜柱:

①3倍體積滅菌去離子水;

②5倍體積1×離子化緩衝液;

③3倍體積8 m尿素的1×結合緩衝液。

(3)柱層析

①待8 m尿素的1×結合緩衝液下降至層析柱表面,小心加入製備好的融合蛋白變性裂解上清液。

②用10倍體積8 m尿素的1×結合緩衝液過柱。

③用6倍體積8 m尿素的1×漂洗緩衝液過柱。

④用6倍體積8 m尿素的1×洗脫緩衝液洗脫結合蛋白,按需要分段收集洗脫緩衝液。

⑤用3倍體積8 m尿素的1×結合緩衝液過柱。

⑥用1倍體積8 m尿素的1×結合緩衝液儲存層析柱。

2.2.4.16 蛋白的透析

(1)將成捲的透析袋剪下適用的長度(一般為20-30 cm),在過量的10 mmol/l nahco3中潤濕透析袋,並煮沸幾分鐘。在5 mmol/l na2edta煮沸幾分鐘。

(2)重複一次。

(3)用去離子水洗數次,於5 mmol/l na2edta(或20%-50%的乙醇)中儲存於4 ℃以防分解纖維素的微生物生長。

(4)在透析袋的一端打兩個死結。

(5)用移液管將欲透析的蛋白移入透析袋。

(6)在透析袋的另一端打兩個死結,並將其依次放入10倍於蛋白質溶液以上體積的蛋白質透析緩衝液ⅰ-ⅸ中,用磁力攪拌器緩慢的攪拌,以促進溶液的交換。在每種緩衝液中透析4 h以上,達到平衡後更換透析液。

(7)將純化蛋白透析到去離子水中。

5、蛋白的濃縮

將透析袋放入20%聚乙二醇溶液中進行蛋白透析

將純化蛋白濃縮至一定體積,取出透析袋

用蒸餾水沖洗4-5次後吸出濃縮的蛋白

再用蒸餾水沖洗透析袋內壁2次。

以稀釋的牛血清白蛋白(bsa)為對照,將濃縮後的蛋白質進行sds-page電泳分析,用核酸蛋白測定儀測定濃度,置於-20 ℃儲存。

誘導公式學生

25 1 化簡 2 若,求的值.26 已知,且,求的值。27 化簡 28 已知sin 3 求的值 25 1 2 解析 試題分析 1 由誘導公式化簡可得,牢記誘導公式 奇變偶不變,符號看象限 2 將正余弦轉化為正切的形式,可得.試題解析 解 1 2 若,則,考點 誘導公式,同角間的基本關係式.26 解...

三角函式誘導公式及記憶方法

三角函式誘導公式 目錄誘導公式的本質 常用的誘導公式 其他三角函式知識 公式推導過程同角三角函式的基本關係式 同角三角函式關係六角形記憶法 1.兩角和差公式 2.二倍角的正弦 余弦和正切公式 3.半形的正弦 余弦和正切公式 4.萬能公式 5.三倍角的正弦 余弦和正切公式 6.三角函式的和差化積公式 ...

誘導公式教學反思

三角函式誘導公式 教學反思 這節課先回顧三角函式的定義以及誘導公式一,再用課本中的 三個問題引導學生利用圓的對稱性和三角函式定義以小組為單位 並回答問題,老師和學生共同得出誘導公式二。再讓學生模擬公式二的推導過程自己動手推導誘導公式三和四。讓學生觀察這些公式的特點並嘗試著用文本來概括公式二到五,教師...