細胞傳代培養標準操作規程

2022-08-04 07:18:03 字數 1770 閱讀 2831

細胞傳代培養(消化法)標準操作規程

一、原理

細胞在培養瓶長成緻密單層後,已基本上飽和,為使細胞能繼續生長,同時也將細胞數量擴大,就必須進行傳代(再培養)。

傳代培養也是一種將細胞種儲存下去的方法。同時也是利用培養細胞進行各種實驗的必經過程。懸浮型細胞直接分瓶就可以,而貼壁細胞需經消化後才能分瓶。

二、材料和試劑

1. 無菌磷酸生理緩衝液(pbs)

2. 胰酶-edta溶液(0.05%胰酶-0.53mm edta-4na): 以10ml分裝於15 ml無菌離心管中,儲存於–20℃,使用前放在37℃ 水槽回溫。

3. 新鮮培養基

4. 無菌吸管/離心管/培養瓶

三、操作步驟

1. 傳代前準備

(1)預熱培養用液:把已經配製好的裝有培養液、pbs液和胰蛋白酶的瓶子放入37℃水浴鍋內預熱。

(2)用75%酒精擦拭經過紫外線照射的超淨工作台和雙手。

(3)正確擺放使用的器械:保證足夠的操作空間,不僅便於操作而且可減少汙染。

(4)點燃酒精燈:注意火焰不能太小。

(5)準備好將要使用的消毒後的空培養瓶。

(6)取出預熱好的培養用液,用酒精棉球擦拭好後方能放入超淨台內。

(7)從培養箱內取出細胞:注意取出細胞時要旋緊瓶蓋,用酒精棉球擦拭顯微鏡的檯面,再在鏡下觀察細胞。

(8)開啟瓶口:將各瓶口一一開啟,同時要在酒精燈上燒口消毒。

2. 胰蛋白酶消化

(1)加入消化液:小心吸出舊培養液,用pbs清洗(沖洗),加入適量消化液(胰蛋白酶液),注意消化液的量以蓋住細胞最好,最佳消化溫度是37℃。

(2)顯微鏡下觀察細胞:倒置顯微鏡下觀察消化細胞,若胞質回縮,細胞之間不再連線成片,表明此時細胞消化適度。

(3)吸棄消化液加入培養液:棄去胰蛋白酶液,注意更換吸管,加入新鮮的培養液。

3. 吹打分散細胞

(1)吹打制懸:用滴管將已經消化細胞吹打成細胞懸液。

(2)吸細胞懸液入離心管:將細胞懸液吸入10ml離心管中。

(3)平衡離心:平衡後將離心管放入台式離心機中,以1000轉/分鐘離心6-8分鐘。

(4)棄上清液,加入新培養液:棄去上清液,加入2ml培養液,用滴管輕輕吹打細胞製成細胞懸液。

4. 分裝稀釋細胞

(1)顯微鏡下觀察細胞:倒置顯微鏡下觀察細胞量,必要是計數。注意密度過小會影響傳代細胞的生長,傳代細胞的密度應該不低於5×105/ml。最後要做好標記。

(2)分裝:將細胞懸液吸出分裝至2~3個培養瓶中,加入適量培養基旋緊瓶蓋。

(3)繼續培養:用酒精棉球擦拭培養瓶,適當旋鬆瓶蓋,放入co2培養箱中繼續培養。傳代細胞2小時後開始貼附在瓶壁上。

5. 懸浮型細胞的傳代

(1)吸出細胞培養液,放入離心管中,離心1000 rpm 5 分鐘。

(2)吸掉上清液,加入適量之新鮮培養基,混和均勻後,依稀釋比例轉移至新的培養瓶中,以正常培養條件培養。

注意事項:

1.嚴格的無菌操作。

2.適度消化:消化的時間受消化液的種類、配製時間、加入培養瓶中的量等諸多因素的影響,消化過程中應該注意培養細胞形態的變化,一旦胞質回縮,連線變鬆散,或有成片浮起的跡象就要立即終止消化。

附:edta(0.02%乙二胺四乙酸二鈉)消化液配方:

edta 0.20g,nacl 8.00g, kcl 0.

20g, kh2po4 0.02g, 葡萄糖 2.00g,0.

5%酚紅4ml,加入蒸餾水定容至1000ml。10磅20min高壓滅菌,使用時調節ph值到7.4。

注意edta不能被血清中和,使用後培養瓶要徹底清洗,否則再培養時細胞容易脫壁。

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