1 取植物新鮮組織約100 mg或乾重組織約30 mg，加入液氮充分研磨。
2 將研磨好的粉末迅速轉移到預先裝有700 μl 65℃預熱緩衝液gp1的離心管中（實驗前在預熱的gp1中加入巰基乙醇，使其終濃度為0.1%），迅速顛倒混勻後，將離心管放在65℃水浴20 min，水浴過程中顛倒離心管以混合樣品數次。
3 加入700 μl氯仿，充分混勻，12,000 rpm（~13,400×g）離心5 min。
注：若提取富含多酚或澱粉的植物組織，可在第3步前，用酚：氯仿/1:1進行等體積抽提。
4 小心的將上一步所得水層上相轉入乙個新的離心管中，加入700 μl緩衝液gp2，充分混勻。
5 將混勻的液體轉入吸附柱cb3中，12,000 rpm（~13,400×g）離心30 s，棄掉廢液。（吸附柱容積為700μl左右，可分次加入離心。）
6 向吸附柱cb3中加入500 μl緩衝液gd（使用前請先檢查是否已加入無水乙醇），12,000 rpm（~13,400×g）離心30 s，倒掉廢液，將吸附柱cb3放入收集管中。
7 向吸附柱cb3中加入600 μl漂洗液pw（使用前請先檢查是否已加入無水乙醇），12,000 rpm（~13,400×g）離心30 s，倒掉廢液，將吸附柱cb3放入收集管中。
8 重複操作步驟7。
9 將吸附柱cb3放**集管中，12,000 rpm（~13,400×g）離心2 min，倒掉廢液。將吸附柱cb3置於室溫放置數分鐘，以徹底晾乾吸附材料中殘餘的漂洗液。
注意：這一步的目的是將吸附柱中殘餘的漂洗液去除，漂洗液中的乙醇的殘留會影響後續的酶反應（酶切、pcr等）實驗。
10 將吸附柱cb3轉入乙個乾淨的離心管中，向吸附膜的中間部位懸空滴加50-200 μl洗脫緩衝液te，室溫放置2-5 min，12,000 rpm（~13,400×g）離心2 min，將溶液收集到離心管中。
注意：洗脫緩衝液體積不應少於50 μl，體積過小影響**率。洗脫液的ph值對於洗脫效率有很大影響。
若用水做洗脫液應保證其ph值在7.0-8.5範圍內（可以用naoh將水的ph值調到此範圍），ph值低於7.
0會降低洗脫效率；且dna產物應儲存在-20℃，以防dna降解。為增加基因組dna的得率，可將離心得到的溶液再加入吸附柱cb3中，室溫放置2 min，12,000 rpm（~13,400×g）離心2 min。
動物組織基因組DNA的提取
4.加入200 l無水乙醇，充分振盪混勻15s，此時可能出現絮狀沉澱，簡短離心以去除管蓋內壁的水珠。沉澱dna 6.向吸附柱cb3中加入500 l緩衝液gd 使用前先檢查是否已加入無水乙醇 12,000rpm 13,400 g 離心30s，倒掉廢液，將吸附柱cb3放 集管中。7.向吸附柱cb3中加入...
CTAB提取植物DNA步驟
一 將冷凍乾燥的樣品用液氮研磨成粉末，轉移到離心管，加入65 預熱的2ml ctab抽提液，65 保溫30 min 以上，間或輕搖混勻 12 000 r min室溫離心10 min，取上清液 二 加入等體積的苯酚 氯仿 異戊醇 25 24 1 輕輕混勻15 min以上，12 000 r min室溫離...
植物總DNA的提取
採用常規ctab法抽提植物基因組dna，步驟如下 1 取約0.3 g植物葉片，在液氮中研磨成粉末 2 迅速將粉末轉移到2 ml的離心管中，加入4倍體積 w v 預熱的ctab提取緩衝液 含2 巰基乙醇 溫和混勻 3 65 保溫30 60 min，期間不時搖動，使其充分混勻 4 12,000 rpm離...