用於水培的盆缽上必須準備蓋板。配備蓋板的目的有二，一是固定植株，二是防止陽關照射盆內，避免根部接觸陽光和盆內藻類的滋生。目前通用的硬質塑料板或泡沫聚乙烯，上面的孔洞有大小不同的孔徑，可以固定不同種類的作物。
在植株和孔洞之間，用微孔泡沫塑料添充，以固定植株。
本試驗選用小塑料桶（容積約為3公升）作為培養容器，用泡沫做成比塑料桶口大小稍大的容器蓋，蓋子上鑽5個小孔洞（中間乙個，四周各乙個），以固定作物和通氣，當中乙個用以通氣，周圍4個用以定植幼苗。
把配好的完全營養液倒入清潔的培養容器中至液面離盆頂約1.5cm，在盆缽內壁距盆頂1.5cm處做一標記，以便作為以後加水的依據。
1.2.3 幼苗移植
待事先培育的菜心幼苗其幼根生長至2～4cm時，選擇長勢良好且生長情況和高度相對一致的幼苗，先將幼根上的沙礫沖洗乾淨，把根併攏，然後用海綿將幼苗固定在孔洞中，根要浸於培養液中。每孔洞植1株。移植好後，將幼苗置於培養室旁的陽台上培養，待作物生長穩定後移到網室內繼續培養。
1.2.4 營養液的選擇和配製
本次試驗研究植物缺素症狀，採用的是不完全營養液，其按如下配製方法：
1.2.4.1 大量營養元素及鐵貯備液的配製
用純水按如下配製如下濃度的貯備液：
大量營養元素及鐵貯備液的配製
配製貯備液為500ml,按表中相應的濃度稱取分別稱取的量如下表：
1.2.4.2 微量元素貯備液的配製
稱2.86g h3bo3,1.81gmncl2·4h2o,0.
22gznso4·7h2o,0.08gcuso4·5h2o,0.09g h2moo4·4h2o(85% moo3)溶於蒸餾水中，定容至1l。
注：製備鐵和微量元素貯備液時，各種鹽類分別溶解，防止沉澱，同時，對於難溶的，還可微熱溶解。
1.2.4.3 培養液的配製（按不同的時間配製不同的營養液）
（一）、剛移植時，各盆均採用完全營養液，還未進行缺素處理，即9月12日，按表中的量配製10公升的培養液。分裝入四個盆缽中（四次重複）。
（二）、9月28日，菜心長勢皆穩定，開始進行缺素處理，按如下的量配製
營養液注：在配製時應調溶液的ph值為6.0～6.5
1.2.5 管理
本次試驗從9月12日開始至10月24日結束。其中，從9月28日開始進行缺素處理。
1.2.5.1 通氣
通氣是水培試驗管理中一項重要工作。培養液中的氧氣有限，因此，每天管理時，必須通氣以補充氧氣。作物生長初期用電動氣幫浦鼓氣，使空氣經過導管進入營養液內，供氣速度控制在每秒2～3個氣泡為宜。
作物生長穩定後，則採用人工通氣，即開啟容器蓋子上中間的那個通氣小孔，將小玻璃管從通氣小孔插入培養液中，用嘴向培養液裡吹氣，之後用小玻璃管攪拌培養液數次，使通氣均勻。在作物生長初期每天或隔天通氣一次，每次約5min；在生殖期後每天通氣一次，每次約10min。
1.2.5.2 加水及調節培養液ph值
每天加一次水，以補充因植物吸收和蒸發而失去的水分，尤其在作物生長旺盛期，其量每次加至盆壁原標記處。ph不僅影響營養液的正常生長，而且影響營養液中養分的形態。在作物生長的過程中，由於氮源或其他鹽類生理反應的影響，常使營養液ph值發生變化，為保持適宜的ph值，每隔2～3d用精密ph計檢查各盆營養液的ph值，用lnnaoh或lnhcl調節，調節ph 至5.
5～6.5。
1.2.5.3 更換營養液和培養液濃度的調節
一般來說，植株在生長過程中，一方面消耗營養液中的水分，使盆缽中液面下降；另一方面吸收營養液中的養分，改變著營養液的養分濃度和ph值。因此，除及時補水和調節ph值外，也應適時地更換營養液。在生長初期每週更換一次培養液，作物生長旺盛期至開花每週更換二次培養液。
其中，在未進行缺素處理時，進行了1次的營養液的更換。
剛移植時，各盆均採用完全營養液，使作物幼苗在移栽後能夠較好的適應新的生長環境；幼苗生長穩定後，開始根據試驗要求分別選用不同的營養液培養，進行缺素處理。
1.2.5.4 防止病蟲害
經常檢查作物病蟲危害情況，並進行相應的防範。
1.2.6 觀察記載
每天或隔天觀察一次作物的生長狀況，並詳細記錄下作物生長發育狀況的全過程，對兩組作物生長發育狀況進行比較，從而發現缺素（n、p、k）對作物生長發育的影響。觀察物件包括根、莖、葉、花等植株器官。
1.2.7 試驗現象紀錄
處理ⅱ、iii、iv的現象均為與處理ⅰ對比之現象。
第二章分析與小結
2.1 作物缺素的診斷方法
從外形鑑定養分缺乏症時，首先要觀察症狀出現的部位，如果症狀先在老葉出現，說明所缺元素是可以再利用的養分，如n、p、k、mg、zn；如果症狀先在新生組織出現，說明所缺元素不能或難以再利用的養分，如ca、fe、b、s、mn、mo、cu等。
2.2 作物缺素的一般形態特徵：
(根據試驗整理概括)
2.3 作物缺素症狀的簡單分析
①、缺氮植株細胞**及伸長受阻，所以缺氮植株發育受阻，植株矮小，分枝少，根系老化細長；缺氮植株葉綠素合成受阻，故葉色較淺；氮在植株中易從老葉轉移到新葉中供新葉使用，故較多症狀均是從老葉開始出現。
②、缺磷植株細胞蛋白質及核酸合成受阻，影響植物伸長和**；由於細胞較小，其葉綠素含量相對公升高，故而葉色暗綠；由於缺磷阻礙糖分運輸，地上部分積累大量糖分，導致花色素形成，所以出現紫斑。
③、缺鉀導致葉片有褐色斑點，可能與nh3中毒或蛋白質水解導致胺積累中毒有關。
2.4 小結
本次試驗從9月12日開始到10月24日結束，歷時43天。其中，缺素處理觀察的時間為9月28日—10月24日共27天，約佔整個試驗時間的2/3。在這段時間裡，我們根據指導書的要求及指導老師的悉心指導，認真開展水培試驗的各項內容，在這中間，我們遇到了一些問題，也有一些失誤，但最重要的是也收穫了很多的知識。
⑴、注重合作，分工細化。
在本次水培試驗中採用的是小組管理的模式，這就對小組成員之間以及組與組之間的分工和合作提出了較高的要求。在大部分時間裡大家之間的分工合作還是挺好的，使本次試驗得以順利進行，但是也有一些還待加強的地方。例如，本次試驗的日常管理和記錄是小組成員輪流負責的，有時相互之間的交接工作做得不是很好，出現過下一天沒人去的現象；大家的記錄格式也不同，記錄得都比較簡單，等等。
⑵、試驗要嚴謹。
試驗過程中要始終保持嚴謹，這包括嚴謹的試驗態度和嚴謹的試驗過程。我們必須嚴格按照試驗要求來做試驗中的每乙個步驟，不能忽略一些細節。同時，在觀察植株生長過程中的變化時，我們也必須認真的去對待，不能忽略植株的一些微小變化。
我們還必須及時總結，並對各處理之間的差異進行及時的分析。由於在本次試驗的管理中存在一些疏忽和不夠嚴謹的地方，所以試驗中植株的一些形態特徵表現得並不是十分明顯。
⑶、收穫頗豐。
通過本次試驗，我們更加深刻的了解了水培試驗，為今後的學習打下了堅實的基礎。本次試驗鍛鍊了我們的動手能力和思考能力，讓我們學會了在實驗中如何更好的合作與分工，培養了我們注重細節的良好習慣，同時，也讓我們更加深的體會到了要用科學和嚴謹的態度來對待試驗，對待學習。
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