畢業實驗方案整理

2021-12-21 04:00:38 字數 3670 閱讀 9063

一/配合物2合成方法

環己二胺0.5ml和二乙胺基水楊甲醛(0.9g, 4.

89mmol) {實際上是0.2到0.3g ,i溶於50ml實際上是15到20ml},70到80 度回流反應30分鐘,得到黃色溶液,將金屬ni(oac)2(1.

2621g,4.96mmol),加入到上述黃色溶液中,到產生固體沉澱,在70到75度繼續回流反應3h,冷卻,甲醇,(+25ml甲醇,.80度回流1個小時,提純)乙醚洗滌,水洗滌,得到配合物,

步驟 用集熱式恆溫加熱磁力攪拌器,預熱到75度

2,稱量:

用分析天平稱取二乙胺基水楊甲醛0.2到0.3g,金屬1.2到2g,(用到的東西:稱量紙,天平,裝藥品的回流瓶,)

3回流:二乙胺基水楊甲醛用15到20ml甲醇溶解放到回流瓶中,再放環己二胺0.5ml 回流30min,得黃色溶液,加入金屬,得固體沉澱,70到75度回流3h,冷卻冷卻,甲醇,(+25ml甲醇,.

80度回流1個小時,提純)乙醚洗滌,水洗滌,得到配合物,

4.烘乾

注意事項:回流等過程都要避光

需要用到的儀器:分析天平,(三樓,梁春潔老師)

df-101s用集熱式恆溫加熱磁力攪拌器(一樓,覃利琴老師,)

回流裝置(五樓,有機實驗室)

移液管0.5ml

2、表徵

1.紫外

一.)配緩衝溶液 tris-hcl-kcl 緩衝液配製

一、各物質的引數

tris: 三(羥甲基)氨基甲烷;氨丁三醇;緩血酸銨;三羥甲基氨基甲烷

tris: 121.14 g/mol

kcl:75 g / mol

二、配製tris為10 mmol/l, ph =7.4 的tris-hcl-kcl緩衝溶液(100 mmol/l kcl)

配製250 ml緩衝液各物質的量

kcl = 100 mmol/ l × 0.25 l × 0.075 g / mmol = 1.875 g

tris = 10 mmol/ l × 0.25 l × 0.121 g / mmol = 0.3025 g

用分析天平準確稱取tris 0.3025 g 和 kcl 1.875 g,溶於220ml的蒸餾水中,攪拌溶解後,以1mol/l的鹽酸(稀鹽酸)調節溶液的ph至7.

35,用容量瓶定容至 250 ml,得10 mmol/l, ph =7.35 的tris-hcl-kcl緩衝溶液。

(1.需要用到儀器,分析天平,容量瓶 ph 計

2、 配配合物溶液

一、實驗中的濃度:【配合物】= 2mmol/l [ct-dna]= 2 mmol/l 所使用的緩衝溶液:10 mol/l的tris-hcl緩衝溶液

在比色皿中加緩衝液v = 2940 微公升,配合物的體積 v/[配合物] = 60 微公升

配合物方案1 zn 5.12mg5ml溶劑:二甲基亞碸(用1000微公升的移液器取5次),放到紅色的瓶子中。

cu 5.35mg

ni.....5.25mg

方案二zn (5.12-4*12+2)*0.01mg 即配合物時用量根據金屬不一樣也不一樣

二、測定

1.配合物在緩衝溶液中的穩定性測定

一、實驗中的濃度:【配合物】= 2mmol/l [ct-dna]= 2 mmol/l 所使用的緩衝溶液:10 mol/l的tris-hcl緩衝溶液

在比色皿中加緩衝液v = 2940 微公升,配合物的體積 v/[配合物] = 60 微公升

二、詳細的實驗方案;

1、在內外兩比色皿中分別加入緩衝液2940 微公升,放進紫外儀器,清零。

2、清零完後,在外面的比色皿加配合物60 微公升,裡面的比色皿加二甲基亞碸 60 微公升,混合均勻,隔4 分鐘後掃瞄,得到配合物的紫外吸收峰。

3測完後用5ml的小瓶子將內外比色皿的溶液收集起來,待8、24、48小時從新按測配合物的紫外圖。(後面的測量需要用新的緩衝溶液對機子進行調零。)

注意事項:

1.比色皿的位置不能調換,即原來放在外面的比色皿和裡面的比色皿的位置不能換,比色皿的方向要一直保持在同乙個方向(比色皿旁有字母區分)。

2.不能用手拿比色皿光滑的一面

3.需用擦鏡紙擦乾比色皿表面的水分才能將其放入儀器中測量,溶液放好後記得關好儀器的「門」才進行掃瞄。

二配合物與dna在緩衝溶液中的穩定性測定

一、實驗中的濃度:【配合物】= 2mmol/l [ct-dna]= 2 mmol/l 所使用的緩衝溶液:10 mol/l的tris-hcl緩衝溶液

在比色皿中加緩衝液v = 2940 微公升,配合物的體積 v/[配合物] = 60 微公升。

二、詳細的實驗方案;

1、在內外兩比色皿中分別加入緩衝液2940 微公升,放進紫外儀器,清零。

2、清零完後,在外面的比色皿加配合物60 微公升,裡面的比色皿加二甲基亞碸 60 微公升,混合均勻,隔4 分鐘後掃瞄,得到配合物的紫外吸收峰。

3、掃瞄完成,取出比色皿,在內外兩比色皿中同時加入ct-dna 6微公升,混合均勻,隔4 分鐘後掃瞄。

4測完後用5ml的小瓶子收集起來,待8、24、48、小時從新掃瞄配合物在緩衝溶液中的紫外圖。(開機測時需要用新的緩衝溶液對機子進行調零。)

三ct-dna 與配合物作用的紫外實驗方案(老師發的原始資料)

一、實驗中的濃度:【配合物】= 2mmol/l [ct-dna]= 2 mmol/l

所使用的緩衝溶液:10 mol/l的tris-hcl緩衝溶液

在比色皿中加緩衝液v = 2940 微公升,配合物的體積 v/[配合物] = 60 微公升。

二、詳細的實驗方案;

1、在內外兩比色皿中分別加入緩衝液2940 微公升,放進紫外儀器,清零。

2、清零完後,在外面的比色皿加配合物60 微公升,裡面的比色皿加二甲基亞碸 60 微公升,混合均勻,隔4 分鐘後掃瞄,得到配合物的紫外吸收峰。

3、掃瞄完成,取出比色皿,在內外兩比色皿中同時加入ct-dna 6微公升,混合均勻,隔4 分鐘後掃瞄。

4、每次在內外兩比色皿中同時加入ct-dna 6微公升,混合均勻,隔4 分鐘後掃瞄。使濃度比為 [dna]/[配合物] = 0.1 ,0.

2 ,0.3 ,0.5 ,0.

6......。

注意注意事項:

1、 比色皿的位置不能調換,即原來放在外面的比色皿和裡面的比色皿的位置不能換,比色皿的方向要一直保持在同乙個方向。

2、 獲得九條以上均勻下降的紫外吸收線,最好每兩條線之間的距離逐漸變小,如下圖。

四、配合物自由聚合的測定

一、實驗中的濃度:【配合物】= 2mmol/l [ct-dna]= 2 mmol/l

所使用的緩衝溶液:10 mol/l的tris-hcl緩衝溶液

在比色皿中加緩衝液v = 2940 微公升,配合物的體積 v/[配合物] = 60 微公升。

二、詳細的實驗方案;

1、在內外兩比色皿中分別加入緩衝液2940 微公升,放進紫外儀器,清零。

2、清零完後,在外面的比色皿加配合物60 微公升,裡面的比色皿加二甲基亞碸 60 微公升,混合均勻,隔4 分鐘後掃瞄,得到配合物的紫外吸收峰。

3、掃瞄完成,取出比色皿,在內外兩比色皿中同時加入配合物 6微公升,混合均勻,隔4 分鐘後掃瞄。

4、每次在內外兩比色皿中同時加入配合物 6微公升,混合均勻,隔4 分鐘後掃瞄。獲得九條以上均勻下降的紫外吸收線,最好每兩條線之間的距離逐漸變小。

(儀器的具體操作,就需要你們多找師兄他們了,這兩天應該都會測。)

韋佩東:132********

李兌強:156********

黃蒙謀:136********

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