植物組培試驗

2022-10-27 09:18:04 字數 4792 閱讀 7139

植物組織培養的一些注意事項

一、常用培養基主要特性

1、高鹽成分培養基包括ms、ls、bl、bm、er 等培養基。其中ms 培養基應用最廣泛,其鉀鹽、銨鹽及硝酸鹽含量均較高, 微量元素種類齊全, 其養分數量及比例均比較合適, 廣泛用於植物的器官、花藥、細胞及原生質體的培養。ls、bm、er 培養基由ms 培養基演變而來。

2 、硝酸鉀含量較高的培養基包括b5 、n6 、lh、gs 等培養基。

①b5 培養基b5 培養基除含有較高的鉀鹽外, 還含有較低的銨態氮和較高的鹽酸硫胺素, 較適合南洋杉、葡萄及豆科與十字花科植物等的培養。

②n6 培養基n6 培養基( 朱至清等1975 ) 系我國學者創造, 獲國家發明二等獎, 適用於單子葉植物花藥培養, 柑橘花藥培養也適合, 在楸樹、針葉樹等的組織培養中使用效果也好。

③sh 培養基是礦鹽濃度較高的一種培養基, 其中銨與磷酸是由磷酸二氫銨

( nh4 h2 po4 ) 提供的, 這種培養基適合於某些單子葉及雙子葉植物的培養。

3 、中等無機鹽含量的培養基

①h 培養基本培養基大量元素約為ms 培養基的一半, 僅磷酸二氫鉀及氯化鈣稍低, 微量元素種類減少, 而含量較ms 為高, 維生素種模擬ms 多。適於花藥培養。

②尼奇培養基(niotsch 1969 ) 此培養基與h 培養基成分基本相同, 僅生物素比h 培養基高10 倍。也適合於花藥培養。

③公尺勒培養基(miller 1963 ) 此培養基和blaydes(1966) 培養基二者成分完全相同。適合大豆愈傷組織培養和花藥等培養用。

4 、低無機鹽培養基大多情況下用於生根培養基。有以下幾種:

①改良懷特培養基(white 1963 )

②ws 培養基(wolter & skoog 1966)

③克諾普液( knop 1965 ) 花卉培養上用得多。

④貝爾什勞特液(berthelot 1934)

⑤hb 培養基( holley & baker 1963) 此培養基在花卉脫毒培養和木本植物的莖尖培養中效果良好。其成分是大量元素比1/ 2 克諾普( knop ) 液稍多, 微量元素用貝爾什勞特液, 每公升培養基中加0 . 5ml。

二、與培養基有關的一些細節問題

1、培養基所用藥品應採用等級較高的化學純cp(**) 及分極純ar(二級) , 以免雜質對培養物造成不利影響。

2、調節ph也可用精密ph試紙(應在乾燥器中儲存, 以免吸濕而失效)。培養基過酸的可用1mol/ l 氫氧化鈉( naoh) 來調節; 培養基過鹼的可用1mol/ l 鹽酸( hcl ) 來調節( 1mol/ l naoh 的配製方法是稱40gnaoh, 溶解後加入蒸餾水, 定容到1 000ml 即可。1mol/ l hcl 的配製方法是量取12mol/ l hcl 84ml , 加水定容至1 000ml)。

經高壓蒸汽滅菌後, 由於某些成分的分解(如蔗糖的分解) 或氧化, 酸度會增加( ph 值一般可降低0 . 2 )。有時玻璃器皿質量較差, 其中一部分物質溶解, 也會影響酸度的變化。

這些在調整ph 值時都要考慮進去。分裝後應立即滅菌, 若因故不能及時滅菌, 最好放入冰箱中在24h 內完成滅菌工作。滅菌時壓力表讀數為0 .

8kg/ cm2 ~1 . 1kg/ cm2 , 121℃時保持15min~20min 即可。

3、某些生長調節物質, 如吲哚乙酸、玉公尺素及某些維生素等物質遇熱不穩定, 因此不能進行高壓滅菌, 而需用過濾方法滅菌, 經過濾滅菌的溶液, 可在瓊脂培養基溫度下降到大約40℃時加入到已高壓滅菌的培養基中。

4、配好的培養基可放到培養室中預培養3d ,若沒有汙染反應, 則證明是可靠的, 可以使用。暫時不用的培養基最好置於10℃下儲存, 含有生長調節物質的培養基在4℃~5℃低溫下儲存則更理想。含吲哚乙酸或赤霉素的培養基應在配製一周內用完, 其他培養基至多也不能超過乙個月。

一般情況下, 兩周內應用完, 以免幹

燥變質。

三、培養材料及消毒

1、取材季節的影響:大多數植物應在其生長開始的季節取樣, 生長末期或已進入休眠期, 則外植體對誘導反應遲鈍或無反應。

2、器官的生理狀態和發育年齡:沿植物的主軸, 越向上的部分所形成的器官其生長的時間越短, 其生理年齡也越老, 越接近發育上的成熟, 越易形成花器官。反之, 越向下, 其生理年齡越小。

木本植物的組織培養中, 以幼齡樹的春梢嫩枝段或基部的萌條較好, 下胚軸與具有3 對~4 對真葉的嫩莖段, 生長效果也較好 。一般情況下, 幼年組織比老年組織具有較高的形態發生能力。

3、材料大小的影響:材料越小成活率越低, 莖尖培養存活的臨界大小應為乙個莖尖分生組織帶1 個~2 個葉原基, 約0 .2mm~0 .

3mm 大小。葉片、花瓣等約為5mm2 , 莖段則長約0 .5mm。

因此, 除非用於去除病毒否則不宜將外植體切的過小。但並不是說外植體越大越好, 外植體過大易造成汙染, 有實驗證明外植體越大汙染率越高。

4、材料的滅菌:一般是組織越大越易汙染, 夏季比冬季帶菌多,甚至不同年份汙染的情況也有區別。取材最好選在中午或下午, 避開陰雨天取材可減少汙染率。

消毒是為了消滅病菌, 以保證無菌組織培養的進行。但不同植物及一株植物不同部位的組織, 其帶菌程度不同, 它們對不同種類、不同濃度的消毒劑的敏感度也不一樣。最初所使用的消毒劑種類, 濃度及消毒時間的長短都要進行摸索, 以達到最佳的消毒效果。

材料有絨毛最好在消毒液中加入幾滴吐溫- 80 ,對與難消毒的根及地下部位材料可將其浸入消毒液中進行抽氣減壓, 以幫助消毒液的滲入, 從而達到徹底滅菌的目的。潘學峰等( 1998) 報道, 12% 的雙氧水+ 0 .1%的公升汞混合液對南方地下莖生薑滅菌10min 的效果最好。

四、材料的接種

1、接種室的消毒:植物組織培養技術實際上是一種無菌操作和無菌培養技術, 做好接種室的消毒是至關重要的。汙染的主要**是空氣中的細菌和真菌孢子, 因此, 每次接種前應進行地面的清潔衛生工作, 並用70%酒精噴霧使空氣的灰塵沉降, 並用紫外線燈照射20min。

接種前超淨工作檯面要用新潔爾滅或酒精擦洗,並定期清洗過濾膜, 以延長使用壽命。

2、 無菌操作要求:工作人員使用的工作服、帽子、口罩等, 要經常保持乾淨, 並定期進行消毒, 即將洗淨、晾乾的衣帽、口罩等用紙包好後與培養基一起進行高壓滅菌。工作人員的頭髮、衣服、手指中都帶有許多雜菌, 為此要穿上工作服, 戴上帽子, 也必須剪除指甲, 並用肥皂擦洗, 最好再在新潔爾滅溶液中浸泡10

min , 接種操作前則用70%酒精擦洗。工作人員的呼吸所產生的汙染, 主要是

在接種時談話或咳嗽所引起的, 因此, 在操作時應禁止談話並應戴上口罩。

3、材料的分離、切取和接種

切割動作要快, 防止擠壓使材料受損傷而招致培養失敗, 也要避免使用生鏽的刀片, 以防止氧化現象產生。接種時要防止交叉汙染的發生,刀和鑷子等接種工具使用一次應放入70% ( 或95%)酒精中浸泡, 然後灼燒放涼備用。

接種時輕輕取下封口紙, 動作要慢以免氣流衝入瓶中造成汙染。將瓶口靠近酒精燈火焰, 瓶口傾斜, 以免空氣中的微生物落入瓶中,將瓶口外部在燈焰上燎數秒鐘, 將灰塵雜物等固定在原處, 然後用鑷子將外植體送入瓶中, 材料在培養容器內的分布要均勻, 以保證必要的營養面積和光照條件。莖尖、莖段等基部插入固體培養基中, 葉片通常將葉背接觸培養基, 這是由於葉背氣孔多, 利於吸收水分和養分的緣故。

五、材料的初代培養

1、實驗方案的設計

1)、單因子實驗設計:單因子實驗是組織培養中最常用的實驗方法, 尤其在選擇適當的激素種類和濃度配比上使用最多。

2 )、正交實驗設計植物離體培養的成功是由多種因素決定的。正交設計是多因素分析的有力工具, 它可以很方便的從眾多因素中選出主要影響因素及最佳水平, 因為它可以用較少的實驗次數得到較多的資訊。例如, 乙個7 因素水平的實驗, 若將各因素水平全部組合都做一遍, 需要27 = 128 次, 而正交設計只需做8 次實驗就可以了, 雖然實驗次數減少了, 但因為各因素水平搭配均勻, 8 次實驗基本代表了全部實驗的情況。

正交實驗的設計, 主要工具是正交表。大多數生物統計學書都列出了可供選擇的正交表,如l4 ( 23 ) , l8 (27 )見(表2 - 11 , 表2 - 12) 。字母l 右下角號碼8 表示它有8 個實驗要做, 括號內的指數7 表示這張表所安排的實驗最多可考察7 個因素(也可安排2 個~6 個, 超過7 個要選擇其他正交表) , 底數2 表示被考察的因素只要求兩個水平。

在進行實驗前可根據要測試因素的多少及每種因素所考察的水平, 選擇適合的正交表, 然後按表進行實驗。現舉乙個例子來說明, 設影響某種植物試管苗生長的因素有光照時間、光照強度、ph 值、溫度、蔗糖濃度、ba濃度、naa 濃度7 個因素, 每個因素選擇兩個水平, 即, 光照時間( 10h , 14h )、光照強度(1000lx , 2000lx )、ph 值( 5 . 5 , 5 .

8 )、溫度( 20℃ , 25℃) 、ba 濃度( 0 . 5 , 2 . 0 )、naa 濃度( 0 .

5 ,1 . 0)、蔗糖濃度(2% , 4%)。現根據因素和水平的多少選擇乙個適合本實驗的正交表, 選l8 (27)最理想, 填表時, 因素水平對號入座, 見表( 2 - 13 )。

第一號實驗是光照時間10h/ d、光照強度1000lx、ph 值5 . 5、ba 濃度2 . 0、naa 濃度0 .

5、蔗糖濃度4% , 其他實驗依次類推。根據8 個實驗結果, 如出苗數量、苗高、生根數、移栽成活率等, 綜合考慮, 根據需要選取各最適培養條件。也可通過一定的計算方法(參考統計學書) , 算出極差( r) , 極差(r) 表示每個因素在實驗中所起作用的大小, r 越大表示該因素的不同水平對實驗結果的影響越大, 但若沒有可計算的指標時, 還是選擇單因子實驗較好。

2、初代培養物的建立

1)、保證無菌

2)、條件合適:首先, 一定要選擇好合適的作物種類、品種及培養的部位; 其次,一定要選擇合適的培養基, 激素及其他新增物; 還要注意掌握適宜的環境條件。所以在進行一種植物的組織培養之前, 應查詢該種植物有關方面的資料, 根據這種植物過去所採用的培養部位、培養基、培養條件和培養技術等, 再決定自己的工作步驟。

植物組培實驗室配置清單

植物組培實驗室建設 目錄1 功能簡述 1 1 準備室 1 2 滅菌室 1 3 緩衝間 2 4 無菌操作室 2 5 培養室 2 6 馴化室 3 7 溫室 3 8 輔助實驗室 非必要 3 細胞學實驗室 3 生理生化分析室 4 2 裝置及耗材清單 4 1 試驗裝置清單 4 2 常備試劑清單 6 ms培養基...

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