MTT實驗原理步驟注意事項

2022-11-23 03:00:05 字數 4101 閱讀 3791

mtt實驗

原理;步驟;

注意事項;

一、原理

mtt全稱為3-(4,5)-dimethylthiahiazo (-z-y1)-3,5-di- phenytetrazoliumromide,漢語化學名為 3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴鹽,商品名:噻唑藍。是一種黃顏色的染料。

mtt比色法,是一種檢測細胞存活和生長的方法。其檢測原理為活細胞線粒體中的琥珀酸脫氫酶能使外源性mtt還原為水不溶性的藍紫色結晶甲瓚(formazan)並沉積在細胞中,而死細胞無此功能。二甲基亞碸(dmso)能溶解細胞中的甲瓚,用酶聯免疫檢測儀在490nm波長處測定其光吸收值,可間接反映活細胞數量。

在一定細胞數範圍內,mtt結晶形成的量與細胞數成正比。該方法已廣泛用於一些生物活性因子的活性檢測、大規模的抗腫瘤藥物篩選、細胞毒性試驗以及腫瘤放射敏感性測定等。它的特點是靈敏度高、經濟。

缺點:由於mtt經還原所產生的甲瓚產物不溶於水,需被溶解後才能檢測。這不僅使工作量增加,也會對實驗結果的準確性產生影響,而且溶解甲的有機溶劑對實驗者也有損害。

mtt 溶液的配製方法:通常,此法中的mtt 濃度為5mg/ml。因此,可以稱取mtt 0.

5克,溶於100 ml的磷酸緩衝液(pbs)或無酚紅的培養基中,用0.22μm濾膜過濾以除去溶液裡的細菌,放4℃ 避光儲存即可。在配製和儲存的過程中,容器最好用鋁箔紙包住。

實驗的時候我一般關閉超淨台上的日光燈來避光,覺得這樣比較好。

需要注意的是,mtt法只能用來檢測細胞相對數和相對活力,但不能測定細胞絕對數。在用酶標儀檢測結果的時候,為了保證實驗結果的線性,mtt 吸光度最好在0-0.7 範圍內。

mtt一般最好現用現配,過濾後4ºc避光儲存兩周內有效,或配製成5mg/ml儲存在-20度長期儲存,避免反覆凍融,最好小劑量分裝,用避光袋或是黑紙、錫箔紙包住避光以免分解。我一般都把mtt粉分裝在ep管裡,用的時候現配,直接往培養板中加,沒必要一下子配那麼多,尤其當mtt變為灰綠色時就絕對不能再用了。

mtt有致癌性,用的時候小心,有條件最好帶那種透明的簿膜手套.配成的mtt需要無菌,mtt對菌很敏感;往96孔板加時不避光也沒有關係,畢竟時間較短,或者你不放心的時候可以把操作台上的照明燈關掉.

配製mtt時用pbs(ph=7.4)溶解。

pbs配方:nacl 8g + kcl 0.2g + na2hpo4 1.44g + kh2po4 0.24g調ph 7.4,定容1l。

二、幾種mtt法實驗步驟

普通mtt法實驗步驟:

1:接種細胞:用含10%胎小牛血清得培養液配成單個細胞懸液,以每孔1000-10000個細胞(細胞濃度的問題見後面的注意事項)接種到96孔板,每孔體積200ul.

2: 培養細胞:同一般培養條件,培養3-5天(可根據試驗目的和要求決定培養時間)。

3:呈色:培養3-5天後,每孔加mtt溶液(5mg/ml用pbs配製,ph=7.

4)10ul.繼續孵育4 h,終止培養,小心吸棄孔內培養上清液,對於懸浮細胞需要離心後再吸棄孔內培養上清液。每孔加100ul dmso,振盪10min,使結晶物充分融解。

4:比色:選擇490nm波長,在酶聯免疫監測儀上測定各孔光吸收值,記錄結果,以時間為橫座標,吸光值為縱座標繪製細胞生長曲線

藥物mtt法實驗步驟

(1)貼壁細胞:

1: 收集對數期細胞,調整細胞懸液濃度,每孔加入100ul,鋪板使待測細胞調密度1000- 10000 /孔,(細胞濃度的問題見後面的注意事項)。

2: 5%co2,37℃孵育,至細胞單層鋪滿孔底(96孔平底板),加入濃度梯度的藥物,原則上,細胞貼壁後即可加藥,或兩小時,或半天時間,但我們常在前一天下午鋪板,次日上午)加藥.一般5-7個梯度,每孔100ul,設3-5個復孔.

建議設5個,否則難以反應真實情況

3: 5%co2,37℃孵育16-48小時,倒置顯微鏡下觀察。

4: 每孔加入10ulmtt溶液(5mg/ml,即0.5%mtt),繼續培養4h。

若藥物與mtt能夠反應,可先離心後棄去培養液,小心用pbs衝2-3遍後,再加入含mtt的培養液。

5: 終止培養,小心吸去孔內培養液。

6: 每孔加入100ul二甲基亞碸,置搖床上低速振盪10min,使結晶物充分溶解。在酶聯免疫檢測儀od490nm處測量各孔的吸光值。

7: 同時設定調零孔(培養基、mtt、二甲基亞碸),對照孔(細胞、相同濃度的藥物溶解介質、培養液、mtt、二甲基亞碸)。

(2)懸浮細胞:

1: 收集對數期細胞,調節細胞懸液濃度1×106/ml(細胞濃度的問題見後面的注意事項),按次序將①補足的1640(無血清)培養基40ul ;②加actinomycin d(有毒性)10ul用培養液稀釋 (儲存液100mg/ml,需預試尋找最佳稀釋度,1:10-1:

20);③需檢測物10ul;④細胞懸液50ul(即5×104cell/孔),共100ul加入到96孔板(邊緣孔用無菌水填充)。每板設對照(加100ml 1640)

2: 置37℃,5%co2孵育16-48小時,倒置顯微鏡下觀察。

3: 每孔加入10 ul mtt溶液(5 mg/ml,即0.5%mtt),繼續培養4 h。

(懸浮細胞推薦使用wst-1,培養4 h後可跳過步驟4),直接酶聯免疫檢測儀od570nm(630nm校準)測量各孔的吸光值)

4、離心(1000轉x10min),小心吸掉上清,每孔加入100 ul二甲基亞碸,置搖床上低速振盪10 min,使結晶物充分溶解。在酶聯免疫檢測儀od570nm(630nm校準)測量各孔的吸光值。

5、同時設定調零孔(培養基、mtt、二甲基亞碸),對照孔(細胞、相同濃度的藥物溶解介質、培養液、mtt、二甲基亞碸),每組設定3復孔。

三、注意事項:

(1) 選擇適當得細胞接種濃度和培養時間。

一般情況下,96孔培養板的一內貼壁細胞長滿時約有105個細胞。但由於不同細胞貼壁後面積差異很大,因此,在進行mtt試驗前,要進行預實驗檢測其貼壁率、倍增時間以及不同接種細胞數條件下的生長曲線,確定試驗中每孔的接種細胞數和培養時間,以防止細胞過滿。這樣,才能保證mtt結晶形成的量與細胞數呈的線性關係。

否則細胞數太多敏感性降低,太少觀察不到差異。因此,很多高手總結出「寧少勿多」的原則,這一原則在大多數情況下是適用的。

對於體積大,增殖快的細胞,比如腫瘤細胞,在96孔板中不能接種太多數目的細胞。一般應該少於104個/孔。同時,細胞貼壁後不可培養過久,以防過於密集。

大多數腫瘤細胞最佳點板濃度在4000-5000/孔,太少的話sd值會很大。

對於體積小,增殖慢、懸浮的細胞,在96孔板中可以接種更多數目的細胞。甚至可以超過105個/孔。同時,為了觀察藥物對這類細胞的效果,可以較上一種細胞培養更長時間。

在做腫瘤細胞的時候,往往要根據細胞生長速度以及藥物的特性(有時間依賴性和濃度依賴性的藥物)來確定培養時間是48小時還是72小時.

(2) 設定調零孔(只加培養基100ul、mtt10ul、二甲基亞碸100ul)。

(3) 設定空白孔(細胞、藥物溶解介質、培養液共100ul、10ulmtt 、100ul二甲基亞碸)。

(4) mtt實驗吸光度最後要在0-0.7之間,超出這個範圍就不是直線關係。

(5) 96孔板邊緣32孔用無菌pbs填充,因為邊緣的32孔中水分蒸發很快,藥物易被濃縮,對實驗影響大。同時加入pbs液填充後,可以一定程度上保持中間孔的水分。

(6)防止藥物與mtt反應。

如果96孔板中加入了具有氧化還原性的藥物,比如穀胱甘肽、vit e、vitc,那建議你用pbs將細胞洗洗,否則這些藥物會將mtt還原成棕褐色沉澱,這種效果可能是你不需要的。

(7) 吸收值分析

在理想的mtt實驗中,如果是細胞抑制實驗,不加藥物處理的空白組的吸收值應該在0.8-1.2左右,太小檢測誤差佔的比例較多,太大吸收值可能已經超出線性範圍。

這個原理在朗伯-比爾定律中有解釋。

(8)培養過程中換液

100ul的培養液對於10的4~5次方的增殖期細胞來說,很難維持50h以上,如果營養不夠的話,細胞會由增殖期漸漸趨向g0期而趨於靜止,影響結果。如果培養時間長,在48h應該換液一次。

(9) 避免血清干擾

高的血清物質會影響試驗孔的光吸收值。由於試驗本底增加,會試驗敏感性。因此,一般選小於10%胎牛血清的培養液進行。在呈色後,盡量吸淨培養孔內殘餘培養液。

(10)判斷汙染

如加入mtt後都有個別孔立即變為藍黑色,則汙染的可能性極大。在加mtt前可以先在鏡下觀察,看看是否有孔染菌,染菌的孔常常是臨近的。

(11)加dmso前要把液體小心吸掉

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