細菌分子鑑定

2021-04-21 13:16:22 字數 3406 閱讀 8170

三、 瓊脂糖凝膠電泳檢測pcr產物

1)配置用於灌注電泳槽和製備凝膠所需的電泳tae緩衝液;

2)按體積稱取1%(w/v)的瓊脂糖,加tae緩衝液;

3)在微波爐中加熱至瓊脂糖完全溶解;

4)冷卻至60℃左右,加入eb溶液,使之終濃度為0.5ug/ml;

5)將溶液倒入膠膜中,插入膠疏,靜置冷卻;

6)待凝膠完全凝結後,小心將膠梳取出,將凝膠放入電泳槽中;

7)將樣品與緩衝液(loading buffer)充分混合後加入樣品槽;

8)接通電源,維持電壓120v,直到適當時間;

9)切斷電源,將凝膠於紫外燈下觀察,並用紫外成像儀拍照。

四、 dn**斷的**純化

採用takara agarose gel dna fragment recovery kit**純化dna。

1)dna樣品經瓊脂糖凝膠電泳後,將目的dn**斷切出。

2)將含有dn**斷的膠塊切碎後放入1.5ml的microtube中。

3)向裝有膠塊的microtube中加入約3倍凝膠量(體積比)的nai溶液(1mg凝膠視為1ul),55℃加熱使膠塊完全融化。

4)按每20ul矽膠樹脂結合約1ug dna的比例加入適量的矽膠樹脂,充分混合後,於室溫放置20分鐘。

注)矽膠樹脂使用前,一定要充分混勻。

5)離心(10,000rpm、1分鐘)後除去上清液。

注)此上清液在整個**過程結束後,確認**率較高時方可廢棄。如果**率較低時,可在此上清液中再次加入矽膠樹脂液,重新吸附。

6)在microtube中加入500ul清洗液,振盪混勻後離心(10,000rpm、1分鐘),除去上清液。

7)重複操作第6步。

注)為提高dn**斷的**效率,此時應盡量除淨上清液。

8)加入和矽膠等量(體積比)的te緩衝液或滅菌蒸餾水後混勻,55℃水浴中放置10分鐘。

9)離心(10,000rpm,1分鐘)後吸取上清液,注意盡量不要吸取矽膠樹脂。此**上清液即為dna**溶液。

注)為提高**效率,可再重複一次第8步和第9步的操作。

五、擴增的16s rrna基因轉殖於質粒載體上

擴增的16s rdna首先在0.8%低熔點瓊脂糖膠上純化,純化的dna和質粒pucm-t vector在16℃連線16h,然後轉化入 dh5α,轉化子在含x-gal和氨苄青黴素的lb平板上篩選。

1連線反應

基本操作按連線酶說明書進行,外源目的dn**斷與載體dna比例為3:1,按比例加入ddh2o,外源dn**斷,載體dna,連線緩衝液,t4 dna連線酶(promega),16℃連線16hr,用瓊脂糖凝膠電泳檢測連線效果。

2大腸桿菌感受態的製備和質粒的轉化

(1)大量製備感受態細胞

1)從37℃培養12-16h的平板中用無菌牙籤挑取乙個單菌落,轉到含有3ml lb培養基的試管內,37℃振搖過夜。次日取菌液1ml接種至含有100ml lb培養基的500ml燒瓶中,37℃劇烈振盪培養約2-3h(振搖速度為200rpm),待od600值達到0.3-0.

4時將燒瓶取出立即置冰浴10-15min。

2)自該步驟起皆需無菌操作。在無菌條件下將細菌轉移到乙個滅菌處理過的用冰預冷的50ml離心管中。

3)4℃離心,4000g×10min**細胞。

4)棄去培養液,將管倒置於濾紙上1min,以使最後殘留的培養液流盡。

5)加用冰預冷的0.1mol cacl210ml重懸菌體,置冰浴30min。

6)4℃離心,4000g×10min,棄去上清液,倒置於濾紙上1min。

7)再加4ml用冰預冷的0.1mol cacl2重懸菌體。(重懸時操作要輕)。

8)置4℃冰箱置12-16h,即可應用於轉化。

(2)感受態細胞的凍存

如一次製備出的感受態不能用完,可進行凍存保留。其方法為:將感受態分裝成400ul乙份,每份加30%體積的甘油儲存液。置-70℃冰箱,低溫儲存可達3個月之久。

(3)細菌的轉化

1)無菌狀態下取新鮮感受態200ul置於無菌的10ml玻璃試管中。如果使用凍存的感受態細胞時,則將其從-70℃冰箱取出,握於手中,待其解凍後立即吸取200ul轉移至10ml無菌玻璃試管中,剩餘的感受態可棄去,不能再凍存復用。

2)每管加質粒50-100ng,輕輕旋轉以混合內容物,在冰上放置30min。

3)42℃熱休克90s,不要搖動試管。

4)每管加無抗生素的普通lb培養基800ul,37℃搖床(100-150r/min),溫和振搖45min。

5)用無菌彎頭玻璃鋪菌器將200ul菌液鋪於含氨卞青黴素(ap)的瓊脂平板表面,37℃平放20min,然後倒置培養10-14h。

3重組質粒菌落的鑑定

(1)重組質粒菌落的藍白斑篩選

含瓊脂的lb培養基在滅菌後,冷卻至55℃左右向100ml培養基中加入100ul的20gl-1 x-gal、100ul的100mm iptg以及相應抗生素,混勻後鋪成平板。取適量轉化後的菌液塗佈平板,37℃倒置培養過夜,即可長出藍白菌斑。在絕大多數情況下可以確定白色菌斑為插入目的片斷的陽性轉殖。

(2)重組質粒的酶切鑑定

用無菌牙籤挑取初步篩選到的陽性轉殖,在含有相應抗生素的平板上點種儲存,同時接種於含有相應抗生素的lb液體培養基中振盪培養,12-16h後提取質粒,並用相應的限制酶進行酶切鑑定。

六、質粒dna的提取與dna序列分析

從 dh5α細胞中提取含16s rrna基因的pucm-t質粒。純化的質粒pt-16s rdna作為dna測序的模板。

質粒dna的提取

溶液i:50mmol/l葡萄糖,25mmol/l tris-hcl(ph8.0),10mmol/l edta(ph8.0)

溶液ⅱ:200mmol/l naoh,1%sds

溶液ⅲ:3mol/l醋酸鉀(ph4.8)

1)在15ml帶(鋁合金)蓋的試管中加入5ml含相應抗生素的lb液體培養基,接入一單菌落,於37℃,200rpm振盪培養過夜。

2)將1.5ml培養物倒入微量離心管,10,000rpm離心30秒,棄上清。

3)菌體沉澱重懸於150ul溶液i。

4)加入300ul溶液ⅱ,蓋緊管口,快速將離心管顛倒數次,以混合內容物;室溫下靜置3-5分鐘。

5)加入150ul預冷的溶液ⅲ,蓋緊管口,溫和地將離心管顛倒,旋轉數次,使溶液ⅲ在粘稠的細菌裂解液中分散均勻,之後將管靜置於冰上5-8分鐘。

6)12,000rpm離心5min,將上清轉移至另一離心管中。

7)加入等量酚:氯仿,振盪均勻,12,000rpm離心5min,將上層液體轉移到另一離心管。

8)加入2倍體積的無水乙醇,混合後置-20℃放置20分鐘。

9)12,000rpm離心8分鐘,小心棄去上清。

10)用500ul 70%乙醇洗dna兩次,小心棄去70%乙醇。將離心管倒置於吸水紙上,並使質粒dna沉澱塊乾燥。

11)加入30ul含無dna酶的胰rna酶(20ug/ml)的te,重新溶解質粒dna,置-20℃。

七、交由上海生工測序。

附:pcr引物設計見給你發的**。

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