吉林農業大學也食品分子檢測技術複習

2022-08-17 04:09:07 字數 5147 閱讀 8911

食品分子檢測技術

名詞(10分)、填空(20)、選擇(10分)、判斷(10分)、簡答(35分)、簡述(15)

前兩章包括填空和簡答,如職能、基本原則重點後幾章 pcr重點圖+原理

生物晶元製備分析過程核酸探針為重點

食品檢測的必要性:重要性、商品**重要工具、反映國家檢測水平、消費者知情權、質量平衡與保證、特殊物質鑑定、打假。

中藥檢測(指紋圖譜技術):樣品經過適量處理後,採用一定的分析手段,如光譜或色譜能得到指示該樣品特性的色譜光譜的譜圖或影象。

指紋圖譜技術:1、光譜指紋圖譜:uv(紫外)、ir(紅外)、ms(直譜)、nmr(核磁共振)2、色譜:

gc(氣相)、hplc(高壓液相)、tlc(骨髓)、hpce(毛細管)、x射線衍射3、dna:dna表達產物(pr、蛋白印跡)、dna水平(pcr、免疫、基因晶元、探針)。

食品檢測的目的:判定食品的原輔料、半成品及製成品的質量合格與否,證實原輔料、半成品、製成品的符合性,進行食品質量安全評定,考核食品質量,獲取食品質量安全資訊,仲裁食品質量糾紛。

食品檢測的職能:把關、鑑別、報告、預防等職能。

食品檢測的內容(工作程式):1、熟悉與掌握規定要求:一些相應的基本規定—規定具體化,知道是否合格。

2、檢測:按規定方法採用相應儀器、試劑、度量工具、按程式定性定量檢查,並記錄相關資料。3、比較:

將檢測所得結果與規定要求相比較,比較一項或多項檢測指標是否符合規定要求。4、判定:根據比較結果,判定產品是否為合格品。

5、處理:(個體)單件處理—合格,即時轉入下一程式;不合格—據要求相關程度決定返工、**、報廢;批量—發現不合格—>拒收、篩選、複檢,對不合格品應填寫返修單、回用單、廢品單。

良好的實驗室操作規範:「非臨床安全性研究管理規範」—美國、良好實驗室操作規範—glp。

glp內容:1、實驗設施:用於檢測用的儀器設施,存放、試劑配製,操作處理點,清洗設施。

2、人員管理:a\總要求:具備glp意識,了解和熟悉glp的基本內容,全面掌握並嚴格執行glp的要求,具有相應的專業和文化程度,嚴謹的科學作風和職業道德,高度的責任感;b\人員構成:

(a)負責人~具備較豐富實際操作經驗、管理能力,負責實驗設計、修改、整個過程操作,確保實驗實施,保證實驗過程按glp規章制度進行,若有違glp的應先在第三者處理違反glp的事情,對可能出現問題預見、批判、對策。(b)、實驗人員專業技術、文化水平、職業道德、嚴格執行glp 。(c)、監督人員:

對所監督實驗過程難點,易錯點、儀器、實驗人員是否達到glp要求,發現問題、公平、公正、直接匯報負責人。3、標準操作:儀器裝置,微生物,標準操作規程,不應太嚴格、太專業,也不能太鬆。

4、監督體制。

檢測技術基本原則:質量原則、安全原則、快速原則、可操作原則、經濟原則。

檢驗技術操作的一般要求:1、名詞、單位符合國家規定的標準要求。2、試劑均要分析純3、稱量、劑量器具,符合規定並定期進行校準4、稱量的精確度用有效數字表示5、檢驗:

做空白試驗、平行試驗6、檢驗方法的選擇,參照gb 7、取樣必要注意樣品的生產日期、批號、代表性和均勻性。8、一般樣品在檢驗結束後應保留乙個月,以備複檢。

原始樣本:根據待檢食品的性質,按相應規則從待檢食品的各個部位採集少量的小樣,混合在一起,就是該批食品的原始樣本。

平均樣本:將原始樣本混合均勻,按4分法,平均的分出一部分作為全面檢驗用的樣本。(包括:試驗樣本、複檢樣本、保留樣本)

試驗樣本:由平均樣本分出用於全部專案檢驗的樣本。

複檢樣本:檢驗後有分歧,需要重新檢驗的樣本。

保留樣本:儲存一定時間、封存、以備不時之需。

取樣的原則:代表性原則,典型性原則,適時性原則,適量性原則,程式原則。

取樣的方法:1、散裝食品~先表面觀察,攪拌均勻,取樣。2、包裝的~分三個部分:

抽樣、混勻—>大包裝;小包裝—>對同批取樣。3、食具:濾紙,5cm2/km2生理鹽水沾濕貼在內壁,放生理鹽水、檢測水。

微生物學無菌操作方法:1、試劑和用具的滅菌:吸管、長柄勺、匙—>紙、布包起,高壓滅菌;取樣瓶;刀,鑷子—>火焰灼燒;滅菌後妥善保管。

2、無菌操作步驟:樣本、器具紫外照射,75%酒精擦手,帶膠囊的,用酒精塗擦瓶;用滅菌後的匙取樣。迅速放入無菌取樣瓶,密封。

3、注意事項:盡量從未開封的包裝內取樣;預先包好消毒的取樣工具和容器,必須在取樣時方可開啟所包的紙和布;取樣時最好兩人操作,乙個負責取樣,另一人協助開啟取樣瓶,包裝和封口;為了查明某一工序的衛生狀況,可在這一工序處理前和處理後各取乙份樣本作對照;檢查微生物和樣本要在取樣後4h內送至檢驗室。

現場取樣記錄的內容:被取樣單位;樣品名稱;取樣地點、樣本產地、商標數量、生產日期、批號、樣本狀態;被取樣的數量、包裝型別、及規格;感官所見、衛生條件;取樣方式;取樣目的;取樣現場的環境、條件;取樣機構、蓋章、取樣人簽字;取樣日期;被取樣單位負責人簽字。

樣本製備的一般方法:煙—粉碎;肉—絞肉機攪碎;罐頭—汁+固體;蛋類—清、黃混勻;水果、蔬菜—清洗、瀝乾、中軸線切開取一半。

樣本前處理:粉碎;提取;淨化、萃取、層析;濃縮,pr 凍乾/透析—>濃縮

實驗設計:文獻檢索;確定樣本處理方法;檢測方法的確定;分析方法的評價。

資料處理:1、檢驗結果的表示:a、常量檢驗結果:

毫克百分含量—mg/100g、百分含量—g/100g、千分含量—g/kg。b、微量或痕量表示:百萬分含量—mg/kg、十億分含量—ug/kg、萬億分含量—ng/kg。

2、檢驗結果的誤差:系統誤差—儀器、試劑、方法、主觀,隨即誤差—不可避免。3、檢驗結果的評價:

a、準確度:測定值與真實值的符合程度,決定檢驗結果的可靠程度。b、精確度:

在相同條件下,進行多次測定,每次測定結果相互接近的程度,表示了各次測定值與平均值的偏離程度,由偶然誤差決定c、準確度與精確度之間的關係,準確度高。精確度必須高,但精確度高,準確度不一定高。4、檢驗結果的資料處理:

a、資料處理的基本原則:記錄結果的資料只保留一位估計值b、可疑資料可根據四捨六入奇進偶舍原則c、資料相加減結果保留到小數點後,最少位數d、平均值,若有4個或4個以上資料,平均值增加乙個有效數字e、常數,稀釋1/2.1/3時,需幾個有效數字,就取幾個f、表示準確度、精確度時,保留2位有效數字。

5、提高檢測結果準確度的方法:選擇合適的分析方法,儀器、計量器具的校正,增加測定次數,做對照試驗,做**試驗。6、試劑按純度分級:

優級純—標籤顏色為綠—標識gr,分析純—紅—ar,化學純—藍—cp。

pcr反應原理:1、變性:解鏈2、退火:引物與模板結合3、延伸:dna聚合e5』—3』引物,加hntp與引物連線,與模板結合,並不斷延伸。

pcr反應的特點:1、特異性強:影響因素:

引物與模板的特異性結合、tapdna聚合e保真性2、靈敏度高:引物易與模板識別結合,所需模板少3、簡單快捷4、對標本的純度要求低。

引物:與待擴增的靶dna兩端序列互補的人工合成的核苷酸短片斷。

基因長度:1kbp—理想、1~2kbp—有效的、3kbp—無法完成。

引物設計原則:1、長度有限:一般—15~30bp,最佳:

18—24bp,不能超過38bp.2、鹼基隨機分布:gc含量45~65%—允許的,最好45~55%。

3、引物本身不允許形成二級結構4、引物之間,不允許形成引物二聚體5、引物的3』端,引端最後乙個為a,錯配紀機率大,t最小,gc含量不超過4個,最後一位最好為t。6、引物的5』端,允許出現錯配,可在5』端進行鹼基的改變,可引入限制性內切酶的切位點。7、避開簡併位點:

引物3』最後最好落在密碼子第一或第二個鹼基上。

pcr反應體系組成:模板、引物、dntp、dna聚合酶、緩衝液、mg2+、反應促進劑。

純化過程—>得到純淨dna:破壁,edta存在下用鹼性sds;除pr用酚—氯仿;除rna,用rna降解酶;乙醇沉澱。

pcr反應的迴圈引數:1、變性的時間和溫度:最常見94℃,0、5~1、5min,預變性94℃,5~10min。

2、引物的退火,55~72℃ 0、5~1min。3、延伸,最常用72℃,2000bp—>1、5min即可,0、5~2min.4、迴圈數,20~35個迴圈,25~30個時—>平台期。

標準的反應體系(100ul):1、10×buffer 10ul 。2、dntp 200u mol/l 。

3、引物 10~100pmol。4、模板dna 0、1~2ug。5、mg2+ 1、5 nmol/l。

6、加水 100ul.7、dna聚合e 25u。

標準pcr迴圈設定:1、預變性 5~10min 94℃ 。2、變性 0、5~1、5min 94℃ 。

3、退火 0、5~15min 55℃~72℃ 。4、延伸 0、5~2min 72℃ 。5、終延伸 5~10min 72℃ .

6、1~99h 4℃ .

瓊脂糖凝膠電泳~原理:在ph8、0~8、3時,磷酸發生解離,帶負電;在電場力作用下,在電泳池向正極移動,採用適當凝膠介質,在分子篩的作用下,使分子大小和構象不同的核酸分子泳動率出現較大差異,分子量大的可受阻力大,在凝膠孔隙中泳動速度慢,分子量小的快,從而達到分離核酸片段的目的,核酸分子嵌入螢光染料後,在紫外燈下可觀察到核酸片段所在的位置。

螢光染料:溴化乙錠(eb)—橙黃色。

遷移率影響因素:1、dna分子量的大小~分子量的對數和泳動率流速成正比。2、瓊脂糖的濃度~濃度和泳動率流速成反比。

3、dna分子的構象~超螺旋最快開環最慢線性居中。4、電源電壓~在低壓下,電泳速度與電壓成正比5、嵌入染料的存在:eb 改變速度最高15%。

6、離子濃度的影響常用電泳緩衝液~tae tbe tpe。

pcr 技術的發展:1、巢氏pcr:模板量很低用來提高特異性,擴大產量,兩對引物(外部~提高特異性、增大模板量,內部~2次擴增)2、逆轉錄pcr :

真核生物dna含有內含子;引物~隨機引物、6~8bp,oligo d(t),自己設計的特異性引物。3、多變pcr:檢測距離較遠的多個特異性dna序列合成多對引物。

4、不對稱pcr:合成特異長度的單鏈,其中乙個引物量多,另乙個量少。5、反向pcr:

擴增已知序列兩側位置序列。6、增效pcr:用於模板量很低,低濃度引物,高濃度引物。

7、錯定pcr:只知某一端的鹼基序列。步驟:

提取rna或mrna,進行rt—pcr得到cdna,使用dna,與3』端的已知特異引物與5』端的含g引物進行pcr擴增。

pcr技術在微生物檢測中的應用:富集培養,6~7d;李斯特氏菌,溶血基因 12h;金黃色葡萄球菌。

pcr在轉基因食品檢測中的應用:啟動子、目的基因、終止子。

啟動子常用的:花椰菜葉病毒、根瘤膿桿菌、玄參葉病毒。

pcr在動植物性成分食品~缺點:基因汙染、產物純化無統一方法、活菌和死菌無法區分、受一些基質和雜質干擾、活菌和毒素不能同時檢測。

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